Бактериоскопический анализ мокроты

Окраска по Граму

Для окраски препаратов по Граму требуются следующие краски и реактивы:

  1. Разведенный фуксин Циля (фуксин Пфейффера): 1 часть фуксина Циля + 9 частей дистиллированной воды.
  2. Реактив Люголя.
  3. 1 % спиртовой раствор генцианвиолета — 1 г генцианвиолета растворяют в 100 мл 96° этилового спирта. Этот раствор краски можно заменить бумажкой, приготовленной по методу Синева (белую фильтровальную бумажку пропитывают 1% спиртовым раствором генцианвиолета, затем высушивают и разрезают на мелкие квадратики соответственно размеру мазка).

Техника окраски . На фиксированный препарат накладывают бумажку Синева и смачивают ее водой (при отсутствии бумажки Синева ее заменяют белой фильтровальной бумажкой, на которую наносят несколько капель 1% спиртового раствора генцианвнолета). Через 1-2 минуты бумажку сбрасывают и на препарат наливают 1-2 капли реактива Люголя. Через 1-2 минуты препарат обесцвечивают 1-2 каплями 96° этилового спирта до появления бледно-серой окраски материала, смывают водой, на 10-15 секунд наносят сруксин Пфейффера, после чего вновь смывают водой и высушивают. В препаратах могут быть обнаружены (рис. 61) стафилококки, стрептококки, диплококки, палочки Пфейффера, спирохеты Плаута-Венсана, актиномицеты и другие микроорганизмы.

Рис. 61. Различные микроорганизмы в мокроте: диплококки (1), палочки Пфейффера (2), стрептококки (3), стафилококки (4), диплобациллы Фридлендера (5), симбиоз Венсана (6), мицелий актиномицет (7).

Последнее достигается следующими способами а автоклавированием в течение одного часа при 1,5 атм.

Общий анализ мокроты

Мокрота – отделяемый из легких и дыхательных путей (трахеи и бронхов) патологический секрет. Общий анализ мокроты – лабораторное исследование, которое позволяет оценить характер, общие свойства и микроскопические особенности мокроты и дает представление о патологическом процессе в дыхательных органах.

Клинический анализ мокроты.

Мг/дл (миллиграмм на децилитр).

Какой биоматериал можно использовать для исследования?

Как правильно подготовиться к исследованию?

  • Рекомендуется употребить большой объем жидкости (воды) за 8-12 часов до сбора мокроты.

Общая информация об исследовании

Мокрота – это патологический секрет легких и дыхательных путей (бронхов, трахеи, гортани), который отделяется при откашливании. У здоровых людей мокрота не выделяется. В норме железы крупных бронхов и трахеи постоянно образовывают секрет в количестве до 100 мл/сут., который проглатывается при выделении. Трахеобронхиальный секрет представляет собой слизь, в состав которой входят гликопротеины, иммуноглобулины, бактерицидные белки, клеточные элементы (макрофаги, лимфоциты, слущенные клетки эпителия бронхов) и некоторые другие вещества. Данный секрет обладает бактерицидным эффектом, способствует выведению вдыхаемых мелких частиц и очищению бронхов. При заболеваниях трахеи, бронхов и легких усиливается образование слизи, которая отхаркивается в виде мокроты. У курильщиков без признаков заболеваний органов дыхания также обильно выделяется мокрота.

Клинический анализ мокроты является лабораторным исследованием, которое позволяет оценить характер, общие свойства и микроскопические особенности мокроты. На основании данного анализа судят о воспалительном процессе в органах дыхания, а в некоторых случаях ставят диагноз.

При клиническом исследовании мокроты анализируются такие показатели, как количество мокроты, ее цвет, запах, характер, консистенция, наличие примесей, клеточный состав, количество волокон, определяется присутствие микроорганизмов (бактерий, грибов), а также паразитов.

Мокрота по составу неоднородна. Она может содержать слизь, гной, серозную жидкость, кровь, фибрин, причем одновременное присутствие всех этих элементов не обязательно. Гной образуют скопления лейкоцитов, возникающие в месте воспалительного процесса. Воспалительный экссудат выделяется в виде серозной жидкости. Кровь в мокроте появляется при изменениях стенок легочных капилляров или повреждениях сосудов. Состав и связанные с ним свойства мокроты зависят от характера патологического процесса в органах дыхания.

Микроскопический анализ дает возможность под многократным увеличением рассмотреть присутствие различных форменных элементов в мокроте. Если микроскопическое исследование не выявило наличия патогенных микроорганизмов, это не исключает присутствия инфекции. Поэтому при подозрении на бактериальную инфекцию одновременно рекомендуется выполнять бактериологическое исследование мокроты с определением чувствительности возбудителей к антибиотикам.

Материал для анализа собирается в стерильный одноразовый контейнер. Пациенту необходимо помнить, что для исследования нужна мокрота, выделенная при откашливании, а не слюна и слизь из носоглотки. Собирать мокроту нужно утром до приема пищи, после тщательного полоскания рта и горла, чистки зубов.

Результаты анализа должны оцениваться врачом в комплексе с учетом клиники заболевания, данных осмотра и результатов других лабораторных и инструментальных методов исследования.

Для чего используется исследование?

  • Для диагностики патологического процесса в легких и дыхательных путях;
  • для оценки характера патологического процесса в дыхательных органах;
  • для динамического наблюдения за состоянием дыхательных путей пациентов с хроническими заболеваниями органов дыхания;
  • для оценки эффективности проводимой терапии.

Когда назначается исследование?

  • При заболеваниях легких и бронхов (бронхитах, пневмонии, бронхиальной астме, хронической обструктивной болезни легких, туберкулезе, бронхоэктатической болезни, новообразованиях органов дыхания, грибковой или глистной инвазии легких, интерстициальных заболеваниях легких);
  • при наличии кашля с выделением мокроты;
  • при уточненном или неясном процессе в грудной клетке по данным аускультации или рентгенологического обследования.

Что означают результаты?

Количество мокроты при разных патологических процессах может составлять от нескольких миллилитров до двух литров в сутки.

Незначительное количество мокроты отделяется при:

  • острых бронхитах,
  • пневмониях,
  • застойных явлениях в легких, в начале приступа бронхиальной астмы.

Большое количество мокроты может выделяться при:

  • отеке легких,
  • нагноительных процессах в легких (при абсцессе, бронхоэктатической болезни, гангрене легкого, при туберкулезном процессе, сопровождающемся распадом ткани).

По изменению количества мокроты иногда можно оценить динамику воспалительного процесса.

Цвет мокроты

Чаще мокрота бесцветная.

Зеленый оттенок может свидетельствовать о присоединении гнойного воспаления.

Различные оттенки красного указывают на примесь свежей крови, а ржавый – на следы распада эритроцитов.

Ярко-желтая мокрота наблюдается при скоплении большого количества эозинофилов (например, при бронхиальной астме).

Черноватая или сероватая мокрота содержит угольную пыль и наблюдается при пневмокониозах и у курильщиков.

Мокроту могут окрашивать и некоторые лекарственные средства (например, рифампицин).

Запах

Мокрота обычно не имеет запаха.

Гнилостный запах отмечается в результате присоединения гнилостной инфекции (например, при абсцессе, гангрене легкого, при гнилостном бронхите, бронхоэктатической болезни, раке легкого, осложнившемся некрозом).

Своеобразный “фруктовый” запах мокроты характерен для вскрывшейся эхинококковой кисты.

Характер мокроты

Слизистая мокрота наблюдается при катаральном воспалении в дыхательных путях, например, на фоне острого и хронического бронхита, трахеита.

Серозная мокрота определяется при отеке легких вследствие выхода плазмы в просвет альвеол.

Слизисто-гнойная мокрота наблюдается при бронхите, пневмонии, бронхоэктатической болезни, туберкулезе.

Гнойная мокрота возможна при гнойном бронхите, абсцессе, актиномикозе легких, гангрене.

Кровянистая мокрота выделяется при инфаркте легких, новообразованиях, травме легкого, актиномикозе и других факторах кровотечения в органах дыхания.

Консистенция мокроты зависит от количества слизи и форменных элементов и может быть жидкой, густой или вязкой.

Плоский эпителий в количестве более 25 клеток указывает на загрязнение материала слюной.

Клетки цилиндрического мерцательного эпителия – клетки слизистой оболочки гортани, трахеи и бронхов; их обнаруживают при бронхитах, трахеитах, бронхиальной астме, злокачественных новообразованиях.

Альвеолярные макрофаги в повышенном количестве в мокроте выявляются при хронических процессах и на стадии разрешения острых процессов в бронхолегочной системе.

Лейкоциты в большом количестве выявляются при выраженном воспалении, в составе слизисто-гнойной и гнойной мокроты.

Эозинофилы обнаруживаются при бронхиальной астме, эозинофильной пневмонии, глистных поражениях легких, инфаркте легкого.

Эритроциты. Обнаружение в мокроте единичных эритроцитов диагностического значения не имеет. При наличии свежей крови в мокроте выявляются неизмененные эритроциты.

Клетки с признаками атипии присутствуют при злокачественных новообразованиях.

Эластические волокна появляются при распаде ткани легкого, которое сопровождается разрушением эпителиального слоя и освобождением эластических волокон; их обнаруживают при туберкулезе, абсцессе, эхинококкозе, новообразованиях в легких.

Коралловидные волокна выявляют при хронических заболеваниях (например, при кавернозном туберкулезе).

Обызвествленные эластические волокна – эластические волокна, пропитанные солями кальция. Их обнаружение в мокроте характерно для туберкулеза.

Спирали Куршмана образуются при спастическом состоянии бронхов и наличии в них слизи; характерны для бронхиальной астмы, бронхитов, опухолей легких.

Кристаллы Шарко Лейдена – продукты распада эозинофилов. Характерны для бронхиальной астмы, эозинофильных инфильтратов в легких, легочной двуустки.

Мицелий грибов появляется при грибковых поражениях бронхолегочной системы (например, при аспергиллезе легких).

Прочая флора. Обнаружение бактерий (кокков, бацилл), особенно в больших количествах, указывает на наличие бактериальной инфекции.

  • При трудно отделяемой мокроте перед сдачей анализа могут быть назначены отхаркивающие препараты, обильное теплое питье, ингаляции с физиологическим раствором.
  • Интерпретация результатов анализа должна осуществляться лечащим врачом с учетом клинических данных и других лабораторных и инструментальных обследований.

Кто назначает исследование?

Пульмонолог, терапевт, педиатр, врач общей практики, ревматолог, фтизиатр, аллерголог, инфекционист, клинический миколог, онколог, паразитолог.

Литература

  • Лабораторные и инструментальные исследования в диагностике: Справочник / Пер. с англ. В. Ю. Халатова; под. ред. В. Н. Титова. – М.: ГЭОТАР-МЕД, 2004. – С. 960.
  • Назаренко Г. И., Кишкун А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. – М.: Медицина, 2000. – С. 84-87.
  • Ройтберг Г. Е., Струтинский А. В. Внутренние болезни. Система органов дыхания. М.: Бином, 2005. – С. 464.
  • Kincaid-Smith P., Larkins R., Whelan G. Problems in clinical medicine. – Sydney: MacLennan and Petty, 1990, 105-108.

ГЭОТАР-МЕД, 2004.

Общий анализ мокроты: виды, как сдать, показатели, норма и расшифровка

Анализ мокроты играет важную роль в диагностике деструктивных и воспалительных заболеваний органов дыхания. Мокрота – это секрет слизистой оболочки бронхов и легочных альвеол, выделяющийся наружу при кашле. У здоровых людей в норме он не отделяется, за исключением курильщиков, лекторов, певцов.

По составу мокрота неоднородна, включает в себя разные элементы (слизь, нити фибрина, кровь, гной), причем присутствие их всех одновременно не обязательно. Свойства мокроты во многом определяются характером патологического процесса, протекающего в легких или бронхах, поэтому исследование является необходимым для выявления возбудителя воспаления.

Расшифровка анализа мокроты довольно сложна, так как один и тот же показатель может служить признаком разных заболеваний органов дыхательной системы.

При появлении кашлевых толчков ко рту ребенка быстро подносят открытую чашку Петри, куда и попадают вылетающие изо рта малыша кусочки мокроты.

Бактериологический метод

Зачастую при исследовании анализов возникает необходимость определить чувствительность патогена к тому или иному препарату. В этом случае проводится исследование образца по бактериологическому методу. Данный способ состоит из следующих этапов:

  • Сперва необходимо очистить культуру с целью выявить конкретные виды микробов. Для этого образец нужно поместить в среду, в которой развитие бактерий, которые нужно выявить, наиболее вероятно. Также возможно механическое разделение биоматериала при его посеве.
  • После получения чистой культуры, взятые из нее образцы исследуются с помощью бактериоскопического метода.

Ниже приведены примеры сред, используемые для выявления микроорганизмов:

  • Среда Эльшнига, состоящая из одной трети лошадиной сыворотки и двух третей бульона.
  • Сыворотка Леффлера, которая используется для выявления возбудителей дифтерии. Такая среда состоит из трех четвертых сыворотки лошадиной или бычьей крови и одной четвертой бульона с содержанием 1% глюкозы.
  • Кровяной агар, используемый для выявления стрептококков и проверки их чувствительности к воздействию антибактериальных препаратов. Данная среда состоит из 5-10% сыворотки крови животных и агара.

По прошествии данного промежутка времени препарат промывается водой и высушивается, после чего его можно исследовать под микроскопом.

Методы исследования посева на микобактерии

Исследование мокроты на наличие микобактерий туберкулеза (БК) производится при помощи:

  • прямой микроскопии;
  • люминесцентной бактериоскопии;
  • посева на питательные среды;
  • биологического метода (утратил свою актуальность);
  • ИФА;
  • ПЦР;
  • BACTEC MGIT.

Бактериоскопический метод диагностики (прямая микроскопия) заключается в исследовании мокроты после ее окраски по Цилю-Нильсену. В мазке микобактерии визуализируются в виде красноватых палочек.

К преимуществам метода относят быстроту и простоту процедуры. Однако информативность ее невысока. Для улучшения качества обследования используют методики обогащения материала (флотация, седиментация) и окраску люминесцентными красителями.

Люминесцентная бактериоскопия использует свойство различного свечения объектов в ультрафиолетовом спектре. В результате МТБ визуализируются в виде золотистых палочек на темном фоне. По данным исследователей, информативность бактериоскопии в этом варианте увеличивается на 30%.

Метод флотации позволяет выявить микобактерии даже при их незначительном содержании. К свежесобранной мокроте добавляют водную суспензию лёгких углеводородов. Затем пробирку встряхивают, после чего раствор оставляют на некоторое время для отстаивания. Позднее на поверхности раствора образуется флотационное кольцо, которое в большом количестве содержит микобактерии. Этот материал используют для приготовления мазков.

При седиментации осаждение микобактерий происходит в результате добавления хлороформа с последующим центрифугированием. Из полученного осадка готовят мазок, который красят и изучают под микроскопом.

Бактериологический (культуральный) метод основан на выращивании колоний возбудителя на питательной среде. Преимущество такого исследования мокроты на кислотоустойчивые микобактерии (КУМ) заключается в высокой чувствительности метода. Для обнаружения необходимо от 20 до 100 жизнеспособных клеток в 1 мл. Также возможно детально изучить возбудителя: определить его типовую принадлежность и лекарственную устойчивость. К недостаткам метода относят длительность обследования и его высокую стоимость.

Также мокроту могут исследовать при помощи ПЦР (полимеразной цепной реакции). В этом случае в биологическом материале осуществляется поиск и верификация ДНК возбудителя.

При проведении ИФА (иммуноферментного анализа) в биологическом материале обнаруживаются антигены и антитела. Недостатком метода считается низкая специфичность ввиду большого количества перекрестных реакций.

Помимо классических методов, в практике используются системы микробиологического мониторинга (BACTEC MGIT). Однако ввиду высокой себестоимости исследование проводится редко.

Применение других способов исследования мокроты в настоящее время ограничено.

Дифференциальная диагностика туберкулеза — не всегда простой процесс. Прочитать про отличие этого заболевания от других можно в отдельной статье.

Однако информативность ее невысока.

Клинический анализ мокроты

Обызвествленные эластические волокна эластические волокна, пропитанные солями кальция.

Бактериоскопия и посев мокроты

Сбор мокроты.

Мокрота(sputum) – это патологическое отделяемое из дыхательных путей – легких, бронхов, трахеи, гортани, выделяется при кашле или отхаркивании. В состав мокроты могут входить слизь, серозная жидкость, клетки крови и дыхательных путей.

Сбор мокроты желательно осуществлять утром (так как она накапливается ночью) и до еды. Анализ мокроты будет достоверней, если пациент предварительно почистил зубы щёткой и прополоскал рот кипячёной водой, что позволяет уменьшить бактериальную обсеменённость полости рта.

Анализ мокроты следует проводить подготовленному и обученному пациенту:

Мокрота лучше отходит и её образуется больше, если накануне исследования пациент употреблял больше жидкости;

Сбор мокроты проходит эффективней, если пациент предварительно выполняет три глубоких вдоха с последующим энергичным откашливанием. Необходимо подчеркнуть, что важно получить именно мокроту, а не слюну.

Сбор мокроты выполняют в стерильный разовый герметичный флакон (контейнер) из ударостойкого материала с навинчивающимся колпачком или плотно закрывающейся крышкой. Флакон должен иметь ёмкость 20-50 мл и широкое отверстие (не менее 35 мм в диаметре), чтобы пациент мог легко сплёвывать мокроту внутрь флакона. Для возможности оценки количества и качества собранной пробы флакон должен быть изготовлен из прозрачного материала.

Если сбор мокроты проходит в присутствии медицинского работника, то последнему необходимо одеть перчатки (взятие материала и его отправку следует осуществлять в перчатках). Учитывая, что при энергичном кашле мокрота в виде капель может разбрызгиваться, с профилактической целью следует одеть маску, а при необходимости закрыть глаза очками или сразу всё лицо защитным щитком. Лучше вообще находиться за спиной пациента, выбирая свое положение таким образом, чтобы направление движения воздуха было от медработника к пациенту.

Для провокации кашля, а так-же если мокрота отделяется плохо пациенту проводят в течение 10-15 минут ингаляцию 30-60 мл подогретого до 42-45 градусов Цельсия раствора (в 1 л стерильной дистиллированной воды растворяют 150 г хлорида натрия и 10 г бикарбоната натрия). У большинства пациентов после подобной ингаляции ещё в течение нескольких часов наблюдается остаточная гиперсекреция бронхиального содержимого. Для исследования достаточно 3-5 мл мокроты, но анализ можно проводить и при меньших объёмов. Анализ мокроты необходимо проводить не позднее, чем через 2 часа после сбора. Если собранная мокрота подлежит транспортировке в другое учреждение, то до момента отправки в лабораторию герметично закрытые флаконы с материалом хранятся в холодильнике не более 2-3 суток. При более длительном хранении необходимо применить консервирующие средства. Во время транспортировки мокрота должна быть защищена от воздействия прямых солнечных лучей и тепла.

Факторы, влияющие на результат исследования:

1. Неправильный сбор мокроты.

2. Мокрота несвоевременно отправлена в лабораторию. В несвежей мокроте размножается сапрофитная флора, разрушаются форменные элементы.

3. Анализ мокроты проведён уже после назначения антибактериальных, противогельминтных средств.

Анализ мокроты.

Если мокрота отделяется в виде небольших плевков, то – это защитная реакция. Если много – это патология. При хроническом бронхите выделяется слизистая или гнойная мокрота до 250 мл в сутки. При бронхоэктазах (расширение бронхов или их отделов), абсцессе лёгкого – мокрота обильная, гнойная, с запахом, до 500 мл/сут.

Утренний кашель с мокротой характерен в первую очередь для курильщиков с хроническим бронхитом. Ночью мокрота скапливается в бронхах, а утром после подъёма с постели вследствие перемены положения тела перемещается, раздражая рефлексогенные зоны и вызывая кашель. Кашель с мокротой в течение дня у подростков, скорей всего будет обусловлен гайморитом, а не хроническим бронхитом.

Читайте также:  Если при беременности не проходит молочница

По положению больного, при котором мокрота отделяется лучше всего, можно получить условное представление о локализации полости или бронхоэктазов в лёгком. При расположении бронхоэктазов в левом лёгком выделение мокроты с кашлем будет облегчаться при нахождении на правом боку, и наоборот. При бронхоэктазах в передних отделах лёгких, мокрота лучше отходит в положении лёжа на спине, в задних отделах – на животе. Данное обстоятельство используется для постурального дренажа лёгких (пациент 3-4 раза в день занимает определённое положение на 10-20 минут для облегчения отхождения мокроты под влиянием силы тяжести).

В исследования физических свойств входят: характер, цвет и консистенция.

Анализ мокроты начинают с её внешнего осмотра в чашке Петри, которую ставят попеременно на чёрный и белый фон.

Общее правило: прозрачная слизь – это обычная защитная мокрота; мутная мокрота – идёт воспалительный процесс.

Слизистая мокрота – бесцветная (прозрачная), вязкая, практически не содержит клеточных элементов. Встречается при многих острых и хронических заболеваниях верхних и нижних дыхательных путей.

Серозная мокрота – бесцветная, жидкая, пенистая. Выделяется при отёке лёгких.

Гнойная (или гнилостная) мокрота содержит гной. Цвет мокроты – жёлтый или зелёный. Чисто гнойная мокрота встречается, например, при прорыве абсцесса лёгкого в бронх; чаще наблюдается смешенная – слизисто-гнойная мокрота. Гнойная (или гнилостная) мокрота содержит гной. Цвет мокроты – жёлтый или зелёный. Чисто гнойная мокрота встречается, например, при прорыве абсцесса лёгкого в бронх; чаще наблюдается смешенная – слизисто-гнойная мокрота.

Зелёный цвет мокроты – это вообще любая патология, связанная с задержкой оттока (гаймориты, бронхоэктазы, посттуберкулёзные нарушения и пр) У подростков при зелёной мокроте в первую очередь надо исключать лор-патологию, а не предполагать хронический бронхит.

Мокрота янтарно-оранжевого цвета отражает эозинофильную реакцию и свидетельствует об аллергии.

Кровянистая – мокрота с примесью крови. Может быть чисто кровяной на фоне легочных кровотечений, так и смешанной, например, слизисто-гнойной с прожилками крови при бронхоэктазах. Если кровь задерживается в дыхательных путях, то гемоглобин превращается в гемосидерин, и цвет мокроты приобретает оттенок ржавчины (ржавая мокрота). Кровь в мокроте (даже единичные прожилки) – всегда настораживающий признак, требующий тщательного обследования (см. файл Кровохарканье).

Жемчужная мокрота содержит округлые опалесцирующие включения, состоящие из атипичных клеток и детрита. Жемчужная мокрота наблюдается при плоскоклеточном раке бронхов.

При отстаивании мокрота может расслаиваться. Трёхслойная мокрота – это обильная, гнойная мокрота, которая при отстаивании разделяется на три слоя: верхний – серозный, пенистый; средний – слизистый, бесцветный, прозрачный; нижний – грязного серо-зелёного цвета, содержащий гной и остатки некротизированных тканей. Наблюдается при гангрене лёгкого.

Из отдельных элементов, различимых простым глазом можно обнаружить:

Спирали Куршмана в виде небольших плотных извитых беловатых нитей.

“Чечевицы” – небольшие зеленовато-жёлтые плотные комочки, состояние из обызвествлённых эластических волокон, кристаллов холестерина. Встречаются при туберкулёзе.

Пробки Дитриха. Макроскопически имеют вид мелких желтовато-серых зернышек с неприятным запахом, содержатся в гнойной мокроте. Микроскопически представляют собой детрит, бактерии, кристаллы жирных кислот в виде игл и капелек жира. Образуются при застое мокроты в полостях, главным образом при абсцессе легкого, бронхоэктазах.

Друзы актиномицетов в виде мелких желтоватых зёрнышек, напоминающих манную крупу.

Мокрота чаще не имеет запаха. Зловонный запах мокроты зависит либо от распада ткани (гангрена, раковая опухоль) либо от разложения белков самой мокроты при задержке её в полостях (абсцесс, бронхоэктазы).

Реакция мокроты, как правило, имеет щелочной характер. Кислой она становится при разложении мокроты (длительное стояние) и от примеси желудочного сока (что помогает дифференцировать кровохарканье от кровавой рвоты).

Бактериоскопия и посев мокроты

Для бактериоскопического исследования предварительно готовят препарат. Вначале растирают комок мокроты между двумя предметными стёклами; затем высохший мазок фиксируют над пламенем горелки и окрашивают: для поисков микобактерий туберкулёза по Цилю-Нильсену, в других случаях – по Грамму.

Чувствительность бактериоскопического метода напрямую зависит от кратности обследования пациента. Например, согласно исследованиям, однократный анализ мокроты на микобактерии туберкулёза имеет чувствительность 80-83%, двукратный анализ мокроты (в течение двух дней) – на 90-93% больше и при исследовании трёх проб мокроты (в течение трёх дней) – 95-98%. Таким образом, при подозрении на туберкулез органов дыхания необходимо исследовать не менее трёх проб мокроты.

Отрицательный результат микроскопического исследования не исключает диагноз той или иной инфекции, так как мокрота пациента может содержать меньше микробов, чем может выявить микроскопическое исследование.

Когда бактериоскопическое исследование не обнаруживает предполагаемого возбудителя, прибегают к посеву мокроты на питательные среды. Посев мокроты производят не позднее 2-х часов после сбора. Если подозревается туберкулёз, то сбор мокроты осуществляют в течение 3-х последовательных дней.

Бактериологическое исследование позволяет идентифицировать вид микробов и определять их антибиотикочувствительность.

Обычно у здоровых лиц в мокроте при посеве выявляются альфа-гемолитический стрептококк, Neisseria spp., дифтероиды. Обнаружение лишь нормальной микрофлоры ещё не означает отсутствие инфекции. Результат посева следует интерпретировать с учётом клинической картины и общего состояния пациента.

Критерием этиологической значимости возбудителя будет выявления микроба в концентрации 106в 1 мл и выше. Но к выявлению микобактерий туберкулёза в любом количестве следует отнестись со всей серьёзностью.

СБОР МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИИ ТУБЕРКУЛЕЗА

Цель: обеспечить качественный сбор мокроты, содержащей достаточное количество микобактерии туберкулеза, если они выделяются.

Оснащение: карманная плевательница для сбора мокроты или чистая, стеклянная широкогорлая банка из темного стекла с крышкой, направление в лабораторию.

ЭтапыПримечание
Подготовка к процедуре
1. Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.
2. Объяснить, что необходимо ежедневно, в течение 3 дней подряд собирать мокроту для исследования в емкость из темного стекла.На свету микобактерии погибают и лизируются.
3. Обеспечить, направлением.
4.Обучить технике сбора мокроты: – предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании.Если пациент испытывает трудности при обучении, оставьте ему письменные рекомендации.
5. Объяснить, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты.
6. Объяснить, что вечером необходимо почистить зубы, а утром прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором.Можно собирать мокроту, которая отходит ночью.
ВЫПОЛНЕНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Утром откашлять и собрать мокроту в чистую банку в количестве не менее 15-20 мл. Закрыть крышку;При скудном отделении мокроты она собирается в течение 1— 3 дней в карманную плевательницу из темного стекла. Хранить в прохладном месте, затем перелить в банку для анализа.
ОКОНЧАНИЕ ПРОЦЕДУРЫ
Прикрепить направление и доставить банку в клиническую лабораторию

Список использованной литературы

1. Лабораторные и инструментальные исследования в диагностике: Справочник / Пер. с англ. В.Ю. Халатова; под. ред. В.Н. Титова. – М.: ГЭОТАР-МЕД, 2004. – 960 с.

2. Kincaid-Smith P., Larkins R., Whelan G. Problems in clinical medicine. – Sydney: MacLennan and Petty, 1990, 105-108.

3. Лабораторные методы исследования в клинике: Справочник. Под ред. проф. Меньшикова В.В. – М.: “Медицина”, 1987. – 368 с.

4. Пропедевтика внутренних болезней. Под ред. В.Х. Василенко, А.Л. Гребнёва. – М.: “Медицина”, 1982. – 640 с.

5. Справочник по клиническим лабораторным методам исследования. Под ред. Е.А. Кост. – “Медицина”, 1975 – 383 с.

Если пациент испытывает трудности при обучении, оставьте ему письменные рекомендации.

Как сдать мокроту на туберкулез

Длительный кашель, который не прекращается на протяжении трех недель, считается показанием для исследования мокроты. Подозрение на туберкулез – серьезный диагноз, поэтому патогенную слизь собирают только под присмотром врача. Данный процесс может происходить в стационарных или амбулаторных условиях. Сдавать мокроту при подозрении на туберкулез приходится 3 раза.

Первый сбор проходит рано утром, второй – по прошествии 4 часов, а последний – на следующий день. Если пациент по какой-то причине не может самостоятельно прийти в больницу для сдачи анализов, к нему домой наведывается медсестра и доставляет полученный секрет в лабораторию. При обнаружении бактерий Коха (микробактерий туберкулеза) врачи ставят диагноз – открытая форма туберкулеза.

Завершающим исследованием является посев на питательные среды.

БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ И БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Ориентировочное представление о преобладающем характере микрофлоры в мокроте даёт изучение её препаратов, окрашенных по Граму. Бактерии, окрасившиеся по Граму в синий цвет, называются грамположительными, в красный – грамотрицательными.

Среди грамположительных бактерий в мокроте можно обнаружить окруженные капсулой диплококки – пневмококки, расположенные в виде цепочек стрептококки, скопления кокков в виде виноградных гроздей – стафилококки. Грамотрицательные возбудители при заболеваниях системы органов дыхания встречаются существенно реже. У больных острой пневмонией определенное патогенное значение могут иметь некоторые энтеробактерии, например, клебсиелла (палочка Фридлендера).

Мицелий друз актиномицетов окрашивается в синий цвет (грам+).

Более информативным бактериологическим методом исследования мокроты является посев на микрофлору и определение чувствительности выделенного возбудителя к антибиотикам. Посев мокроты следует производить до начала антибактериальной терапии. Чтобы исключить контаминацию мокроты микрофлорой из ротовой полости, необходимо предварительно прополоскать рот 2% раствором бикарбоната натрия.

Посев производят как на обычные, так и на специальные питательные среды, в том числе предназначенные для идентификации анаэробных бактерий. Преимуществом обладает количественный метод. Выделенный при посеве бактериальный агент может быть признан этиологическим фактором, если его содержание в 1 мл мокроты превышает 10 6 микробных тел. Для грибов этот показатель составляет 10 12 и более микробных тел. При отсутствии мокроты (например, у больных с затяжным течением пневмонии), проводят бактериологическое исследование промывных вод, полученных во время бронхоскопии.

Для обнаружения микобактерий туберкулёза исследуют окрашенные по Цилю-Нильсену мазки препаратов свежевыделенной мокроты и суточной мокроты, обогащенной методом флотации. Микобактерии туберкулёза при окраске по этому методу приобретают красный цвет.

Достаточно информативным методом выявления микобактерий туберкулёза является изучение окрашенных по Цилю-Нильсону мазков, приготовленных из бронхиальных смывов, полученных при эндоскопическом исследовании.

БИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ.

В необходимых случаях применяют биологическую пробу – заражение морских свинок мокротой от обследуемых больных. Применяют, в основном, для выявления туберкулёза. Мокроту вводят экспериментальному животному (морская свинка). При наличии микобактерий через 1-3 месяца в органах животных могут быть обнаружены характерные для туберкулёза изменения.

ПРИМЕРЫ ИНТЕРПРЕТАЦИИ АНАЛИЗА МОКРОТЫ.

Анализ мокроты

Макроскопическое исследование:

Количество- 30 мл.

Цвет – бесцветная,

Характер – слизистая,

Консистенция – вязкая,

Примеси – нет.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – нет,

Эозинофилы – нет,

Лейкоциты – 10-15 в п.з.,

Эритроциты – нет,

Эпителиальные клетки – 10-16 в п.з.,

Кристаллы холестерина – нет,

Эластические волокна – нет,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – 0-1 в п.з.,

Кристаллы лейцина – нет,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – палочки Пфейффера.

Заключение: выделение мокроты с умеренным повышением лейкоцитов и эпителия, выявление возбудителя свидетельствует об умеренном воспалительном процессе, который наблюдается при негнойном бронхите.

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 15 мл.

Цвет – желто-зелёная,

Характер – слизисто-гнойная,

Консистенция – вязкая,

Примеси – нет.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – нет,

Эозинофилы – 2-4 в п.з.,

Лейкоциты – покрывают п.з.,

Эритроциты – нет,

Эпителиальные клетки – 25-30 в п.з.,

Кристаллы холестерина – нет,

Эластические волокна – нет,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – нет,

Кристаллы лейцина – нет,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – палочка инфлюэнцы.

Заключение:выделение желто-зелёной слизисто-гнойной мокроты вязкой консистенции со значительным увеличением лейкоцитов и эпителия с выявленным возбудителем говорит о гнойном воспалительном процессе в бронхах.

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 40 мл.

Цвет – желто-зелёный,

Характер –гнойный,

Консистенция – вязкая,

Примеси – нет.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – ед.,

Эозинофилы – 4-6 в п.зр.,

Лейкоциты – покрывают п.зр.,

Эритроциты – единичные,

Эпителиальные клетки – 10-20 в п.зр.,

Кристаллы холестерина – не обнаружены,

Эластические волокна – обнаружены,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – 8-10 в п.зр.,

Кристаллы лейцина – нет,

Кристаллы гематоидина – не обнаружены,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – диплобацилла Фридлендера,

Стрептококки.

Заключение:выделение желто-зелёной гнойной мокроты вязкой консистенции со значительным увеличением лейкоцитов и обнаружение возбудителя говорит о гнойном воспалительном процессе. Появление альвеолярных клеток, эластических волокон свидетельствует о локализации процесса в лёгких (пневмония).

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 40 мл.

Цвет – ржавый,

Характер – кровянистогнойный,

Консистенция – вязкая,

Примеси – прожилки крови.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – ед.,

Эозинофилы – 4-6 в п.зр.,

Лейкоциты – покрывают п.зр.,

Эритроциты – на разных стадиях распада 40-50 в п.зр.,

Эпителиальные клетки – 16-20 в п.зр.,

Кристаллы холестерина – нет,

Эластические волокна – обнаружены,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – 20-25 в п.зр.,

Кристаллы лейцина – нет,

Кристаллы гематоидина – обнаружены,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – пневмококк.

Заключение:выделение вязкой гнойной мокроты со значительным увеличением лейкоцитов говорит о воспалительном процессе. Ржавый цвет, прожилки крови, увеличение эритроцитов, кристаллы гематоидина свидетельствуют о застойном процессе в малом круге кровообращения. Появление альвеолярных клеток, эластических волокон, выделение пневмококка свидетельствует о локализации процесса в лёгком (крупозная пневмония).

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 20 мл.

Цвет – стекловидная,

Характер – слизистая,

Консистенция – вязкая,

Примеси – Спирали Куршмана.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – 6-10 в п.з.,

Кристаллы Шарко-Лейдена – 12-14 в п.з.,

Эозинофилы – 15-20 в п.з.,

Лейкоциты – 8-12 в п.з.,

Эритроциты – нет,

Эпителиальные клетки – 6-10 в п.з.,

Кристаллы холестерина – нет,

Эластические волокна – нет,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – нет,

Кристаллы лейцина – нет,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – нет.

Заключение:выделениеслизистой и вязкой (“стекловидной”) мокроты, примеси спиралей Куршмана, при микроскопии триада: спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена и эозинофилы в большом количестве свидетельствуют о бронхиальной астме.

Анализ мокроты

Макроскопическое исследование:

Количество- 480 мл.

Цвет – грязный,

Характер – гнойный,

Консистенция – трехслойная со зловонным запахом,

Примеси – гнойные пробки.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – ед.,

Эозинофилы – ед. в препарате,

Лейкоциты – распавшиеся покрывают п.зр.,

Эритроциты –30-50 в п.зр.,

Эпителиальные клетки – много,

Кристаллы холестерина – обнаружены,

Эластические волокна – много,

Пробки Дитриха – много,

Альвеолярные клетки – обнаружены,

Кристаллы лейцина – обнаружены,

Обрывки легочной ткани – обнаружены,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – спирохеты, стрептококки, фузиформные палочки.

Заключение: обильное выделение мокроты свидетельствует о наличии полости в лёгком. Гнойный характер, трехслойная консистенция со зловонным запахом, при микроскопии много лейкоцитов, частью распавшихся и образующих детрит, выделение гноеродной инфекции свидетельствуют о гнойном воспалительном процессе. Наличие эластических волокон, обрывков легочной ткани, эритроцитов, фибрина, кристаллов холестерина, лейцина, свидетельствуют о деструкции ткани. Все эти признаки говорят о наличии абсцесса лёгкого.

Анализ мокроты

Макроскопическое исследование:

Количество- 80 мл.

Цвет – желто-зелёный,

Характер – гнойный,

Консистенция – вязкая,

Примеси – “чечевицы”.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – нет,

Эозинофилы – 2-5 в п.з.,

Лейкоциты – 40-50 в п.з.,

Эритроциты – 6-12 в п.з.,

Эпителиальные клетки – много,

Кристаллы холестерина – есть,

Эластические волокна –много,

Пробки Дитриха – единичн.,

Альвеолярные клетки – много,

Кристаллы гематоидина – есть,

Обрывки легочной ткани – есть,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – обнаружены,

Др. микроорганизмы – нет.

Заключение: гнойный характер мокроты, увеличение лейкоцитов, наличие эластических волокон, альвеолярных клеток, обрывков легочной ткани, кристаллов холестерина, свидетельствует о воспалительном характере процесса с распадом ткани. Выделение микобактерий туберкулёза свидетельствует о специфическом (туберкулёзном) характере процесса. Это подтверждается появлением зёрен “чечевицы”, содержащих микобактерии.

Читайте также:  Ретинопатия глаза – что это такое?

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 40 мл.

Цвет – “малинового желе”,

Характер – слизисто-гнойная,

Консистенция – вязкая,

Примеси – кусочки опухолевой ткани, фибринозные сгустки.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – нет,

Эозинофилы – 4-6 в п.з.,

Лейкоциты – 30-40 в п.з.,

Эритроциты – 60-80 в п.з.,

Эпителиальные клетки – 26-40 в п.з.,

Кристаллы холестерина – обнаружены,

Эластические волокна – много,

Пробки Дитриха – есть,

Альвеолярные клетки – обнаружены,

Кристаллы гематоидина – обнаружены,

Обрывки легочной ткани – обнаружены,

Атипические клетки – обнаружены.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – стрептококки.

Заключение: гнойный характер мокроты, увеличение лейкоцитов, свидетельствует о воспалительном процессе. Наличие эластических волокон, альвеолярных клеток, обрывков легочной ткани, кристаллов холестерина, свидетельствует о распаде (деструкции) ткани. Цвет “малинового желе”, фибринозные сгустки, повышенное содержание эритроцитов свидетельствуют о кровотечении. Нахождение атипичных клеток указывает на то, что причина заболевания – рак лёгкого.

Анализ мокроты.

Макроскопическое исследование:

Количество- 80 мл.

Цвет – розовая,

Характер – серозная,

Консистенция – жидкая, пенистая,

Примеси – кровь.

Микроскопическое исследование:

Спирали Куршмана – нет,

Кристаллы Шарко-Лейдена – нет,

Эозинофилы – 0-1 в п.з.,

Лейкоциты – 3-6 в п.з.,

Эритроциты – 30-40 в п.з.

Эпителиальные клетки – 6-10 в п.з.,

Кристаллы холестерина – нет,

Эластические волокна – нет,

Пробки Дитриха – нет,

Альвеолярные клетки – обнаружены клетки

” сердечных пороков», (сидерофаги)

Кристаллы гематоидина – обнаружены,

Обрывки легочной ткани – нет,

Атипические клетки – нет.

Бактериоскопическое исследование:

Туберкулезные палочки Коха – нет,

Др. микроорганизмы – нет.

Заключение:выделение жидкой пенистой, розового цвета мокроты с примесью крови, микроскопически эритроциты, кристаллы гематоидина свидетельствуют о легочном кровотечении. Серозный характер и выделение сидерофагов говорит об отёке лёгких.

Поперечные профили набережных и береговой полосы: На городских территориях берегоукрепление проектируют с учетом технических и экономических требований, но особое значение придают эстетическим.

Опора деревянной одностоечной и способы укрепление угловых опор: Опоры ВЛ – конструкции, предназначен­ные для поддерживания проводов на необходимой высоте над землей, водой.

Механическое удерживание земляных масс: Механическое удерживание земляных масс на склоне обеспечивают контрфорсными сооружениями различных конструкций.

Заключение обильное выделение мокроты свидетельствует о наличии полости в лёгком.

Бактериологическое исследование мокроты

Бактериологическое исследование мокроты позволяет обнаружить возбудителей заболеваний легких. Гнойный, кровянистый комочек мокроты растирают между двумя предметными стеклами. Высохшие мазки фиксируют на огне, затем один окрашивают по Граму (см. Грама метод окраски), другой по Цилю — Нельсену. Окраска по Граму позволяет обнаружить грамположительные микробы — капсульный пневмококк (рис. 17), стрептококк, стафилококк; грамотрицательные — капсульная диплобацилла Фридлендера (рис. 18), палочка Пфейффера (рис. 19) и др. Микобактерии туберкулеза ищут в мазке, окрашенном но Цилю — Нельсену. На мазок накладывают кусочек фильтровальной бумаги, равный по площади мазку, наливают на него фуксин Циля (1 г основного фуксина растирают в ступке с несколькими каплями глицерина, затем с 10 мл 96% спирта и приливают к 90 мл 5% раствора фенола) и нагревают на нежарком пламени до появления паров. Бумажку сбрасывают, мазок опускают в 5—10% раствор серной кислоты (или 3% раствор соляной кислоты в спирте) до обесцвечивания, хорошо промывают водой, докрашивают 20—30 сек. 0,5% раствором метиленового синего и промывают водой. Красные микобактерии хорошо видны (при иммерсионной системе) на голубом фоне препарата (рис. 20). В случае ненахождения микобактерии туберкулеза в мазке прибегают к методу их накопления — флотации. 10—15 мл мокроты помещают в бутылку с покатыми плечиками емкостью 250 мл, добавляют двойной объем 0,5% раствора едкого натра и встряхивают до полного растворения мокроты. Прибавляют 100 мл дистиллированной воды и 1 мл толуола (ксилола, бензина), встряхивают 10— 15 мин., доливают воды до горлышка и оставляют на 1—2 часа. Образовавшийся сверху сливкообразный слой отсасывают пипеткой с баллончиком и наносят по каплям на подогретое стекло, каждый раз на предыдущую подсохшую каплю. Препарат фиксируют и красят по Цилю — Нельсену. При отрицательном результате прибегают к посеву мокроты (бактериологическое исследование) или прививке ее животному (биологическое исследование). Посевы мокроты используют также для определения чувствительности ее флоры к антибиотикам.

Химическое исследование. Реакция мокроты на лакмус, как правило, слабощелочная, кислой она может стать при разложении мокроты и при примешивании желудочного содержимого (кислая отрыжка, желудочно-бронхиальный свищ). Белок в мокроте происходит из воспалительного экссудата и из распада лейкоцитов. Его мало (следы) в слизистой мокроте, много (1—2%) в мокроте при пневмонии, еще больше при отеке легкого. Для его определения к мокроте прибавляют двойное количество 3% раствора уксусной кислоты, энергично взбалтывают, фильтруют и в фильтрате определяют белок одним из обычных способов (см. Моча). Учитывают трехкратное разведение.

Бактериоскопическое, бактериологическое и биологическое исследования. Изучение микробной флоры мокроты необходимо для уточнения диагноза и для правильного выбора метода лечения. Этой цели служат бактериоскопическое, бактериологическое и биологическое исследования. Бактериоскопическое исследование достигает цели при относительно большом содержании микробов в мокроте. Для приготовления препаратов гнойный комочек переносят на наружную треть предметного стекла, накрывают такой же частью другого предметного стекла и растирают между ними. Мазкам дают высохнуть, фиксируют трехкратным проведением через пламя газовой горелки и окрашивают, один по Граму (см. Грама метод окраски), другой по Цилю — Нельсену (см. Туберкулез, лабораторные исследования). Окраска по Граму позволяет выявить грамположительный капсульный пневмококк, грамотрицательную капсульную пневмобациллу Фридлендера, палочку Пфейфера (цветн. рис. 5, 6 и 8), стафилококк, стрептококк, палочку Венсана, спириллы, катаральный микрококк и др. При исследовании отмечают количество найденных в поле зрения бактерий (мало, умеренно, много) и преобладание какого-либо вида. Способом Циля — Нельсена окрашивают кислотоупорные микробы, главным образом микобактерии туберкулеза. Микобактерии при этой окраске получаются красного цвета и хорошо видны на голубом фоне (цветн. рис. 1).

Несколько больший процент микобактерий туберкулеза выявляют при помощи люминесцентной микроскопии (см.). Светящиеся микобактерии хорошо видны при исследовании мазка с сухим объективом Х40 при окуляре ХЮ. Мазки приготовляют и фиксируют, как обычно, затем заливают на 5—10 мин. раствором красителя (аурамин 1 : 1000, акридин оранжевый, смесь аурамина и родамина), промывают водой, обесцвечивают 5 мин. солянокислым спиртом, опять промывают водой и обрабатывают
раствором кислого фуксина (кислый фуксин 1 г, уксусная кислота 1 мл, дистиллированная вода 500 мл) или метиленового синего, которые гасят свечение фона. Препарат рассматривают в ультрафиолетовом свете (цветн. рис. 2).

Для облегчения поисков микобактерий туберкулеза прибегают к методам накопления, из которых чаще применяют метод флотации. 10—15 мл мокроты помещают в эрленмейеровскую колбу или бутылку с покатыми плечиками емкостью 250 мл, добавляют равный объем 0,5% раствора едкого натра и встряхивают смесь до гомогенизации ее. Прибавляют 50 мл дистиллированной воды и 1 мл толуола (ксилола, бензина), встряхивают, снова добавляют воду до половины бутылки и встряхивают 10—15 мин., затем доливают воду до горлышка и оставляют на 1—2 часа. Образующийся сверху сливкообразный слой отсасывают пипеткой с баллончиком, наносят на подогретое предметное стекло, подсушивают, фиксируют и окрашивают по Цилю — Нельсену.

Бактериологическое исследование применяют для идентификации микробов, определения их лекарственной устойчивости, вирулентности и т. д. Мокроту засевают на соответствующие питательные среды — плотные (кровяной агар) или жидкие (сахарный бульон, среды Тароцци), полусинтетическую среду Школьниковой; (цветн. рис. 3 и 4). Выросшие на соответствующих питательных средах микробы идентифицируют, определяют их патогенность (в некоторых случаях) и лекарственную устойчивость, предварительно определяют лекарственную устойчивость всей флоры мокроты в целом. Это производят путем посева кусочков мокроты, предварительно отмытых физиологическим раствором, на поверхность кровяного агара в чашке Петри. На посев раскладывают стандартные антибактериальные бумажные диски. О чувствительности флоры судят по величине зоны задержки роста флоры вокруг диска. Затем производят окончательное определение устойчивости каждого выделенного из мокроты вида бактерий отдельно. Для этого 18-часовую бульонную культуру каждого вида бактерий (стафилококки, стрептококки, клебсиеллы и др.) засевают газоном на чашки Петри с кровяным агаром. На газон раскладывают стандартные бумажные диски с антибиотиками, прижимая их пинцетом к поверхности агара так, чтобы они плотно прикасались к агару всей поверхностью. Чашки оставляют при комнатной температуре на 1,5—2 часа; за это время происходит достаточная диффузия препарата из дисков в окружающие агаровые слои. Затем чашки Петри помещают в термостат при t°37° на 18—24 часа. Об устойчивости исследуемого штамма судят по зоне задержки роста бактерий вокруг дисков. При отсутствии зоны задержки штамм считают устойчивым. Если образуется зона 1,5—2 см в диаметре, штамм считают слабо чувствительным, а при зоне более 2 см — чувствительным к данному антибиотику.

О посеве мокроты на микобактерии туберкулеза см. Туберкулез легких, исследование мокроты на микобактерии туберкулеза; об определении их чувствительности к антибиотикам см. Туберкулез легких, лекарственная устойчивость микобактерий.

При биологическом исследовании мокроты заражают животных. В качестве диагностического этот метод вытесняется культуральными способами.

На газон раскладывают стандартные бумажные диски с антибиотиками, прижимая их пинцетом к поверхности агара так, чтобы они плотно прикасались к агару всей поверхностью.

Культуральный метод

Наиболее распространенным методом выявления микобактерий туберкулеза в нашей стране является культуральный метод. Это “золотой стандарт” бактериологической диагностики туберкулеза, так как чувствительность метода существенно выше микроскопического и дает возможность получить чистую культуру микобактерий для её последующей идентификации и исследования лекарственной устойчивости. Этот метод дает положительные результаты при наличии в исследуемом материале от 20 до 100 жизнеспособных микробных клеток в 1 мл. Однако он трудоемок и длителен в связи с тем, что микобактерии туберкулеза растут очень медленно и их обнаружение может быть зарегистрировано только через 3 недели культивирования.

Исторически сложилось, что питательные среды на яичной основе (Левенштейна-Йенсена, Финна-2, Огавы, Аникина, “Новая”, Попеску) получили наибольшее распространение среди плотных питательных сред, применяемых для выделения МБТ. Посев материала на среду Левенштайна-Йенсена проводят в бактериологической лаборатории. Рост первых колоний на классических средах отмечают через 4 – 8 недель. Однако появившиеся в последние годы агаровые среды Миддлбрука (7Н10, 7Н11) позволяют быстрее обнаружить рост микобактерий (от двух до четырех недель) и обеспечивают лучшие возможности для изучения морфологии колоний, чем на яичных средах. Недостатком агаризованных питательных сред является необходимость инкубации посевного материала в термостате с углекислым газом, поэтому агаризованные среды в России практически не применяются.

Следует отметить, что в связи с высокой избирательностью различных штаммов микобактерий и потребностью в полноценных белках до сих пор нет универсальной питательной среды, способной заменить все остальные. В Приказе № 109МЗ РФ для посева диагностического материала на МБТ рекомендуется использовать по одной пробирке международной питательной среды Левенштейна-Йенсена и Финна-2. Однако практика показывает, что кроме указанных сред целесообразно использовать и какую-либо из дополнительных, а посев на три пробирки питательной среды также повышает эффективность культуральной диагностики.

Для полноценной культуральной диагностики туберкулеза необходимо иметь соответствующие помещения и оборудование. Особенно важно наличие центрифуги и антиаэрозольной защитой и способностью обеспечить ускорение 3000g. А также шкафов биологической безопасности для предотвращения внутрилабораторного инфицирования.

Основным недостатком культуральной диагностики туберкулеза является длительность исследования – от трех недель до трех месяцев. Поэтому остаются актуальными дальнейшие исследования по разработке методов ускорения роста микобактерий.

Для полноценной культуральной диагностики туберкулеза необходимо иметь соответствующие помещения и оборудование.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ СБОРЕ МОКРОТЫ ДЛЯ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

Цель:диагностическая.

Оснащение:

-cтерильная стеклянная широкогорлая банка с крышкой из крафт-бумаги

-направление в лабораторию.

Алгоритм действия:

1.Предупредите и объясните пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования.

2.Объясните, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала антибиотикотерапии.

3.Обучите технике сбора мокроты:

-предупредите, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании;

-объясните, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты;

-объясните, что необходимо вечером почистить зубы, а утром, натощак прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором.

Выполнение процедуры

-Открыть крышку банки.

-Откашлять и собрать мокроту (не слюну) в стерильную банку в количестве не менее 5 мл.

Окончание процедуры

-Прикрепить направление и доставить в бактериологическую лабораторию.

Примечание: для забора материала медсестра должна дать заявку на получение стерильной посуды в транспортный отдел больницы. Стерильная посуда хранится не более 3-х суток. Чистить зубы можно за два часа до сбора мокроты. Следите, чтобы мокрота не попала на край банки и не касайтесь внутренней поверхности крышки и банки. Исследуется свежевыделенная мокрота не позднее 1-1,5 часов. В условиях стационара: в бактериологическую лабораторию мокроту доставляют в герметичном контейнере, а если необходимо транспортировать мокроту на дальнее растояние, то используют спецтранспорт.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ СБОРЕ МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИИ ТУБЕРКУЛЕЗА

Цель: обеспечить качественный сбор мокроты, содержащий достаточное количество микобактерии туберкулеза, если они выделяются.

Оснащение:

-карманная плевательница для сбора мокрота

-стеклянная широкогорлая банка из температурного стекла с крышкой

-направление в лабораторию.

Алгоритм действия:

1.Объясните пациенту цель и методику забора мокроты.

2.Дайте пациенту открытую плевательницу с маркировкой.

3.Станьте за спиной пациента и попросить его поднести плевательницу ко рту, сделать 3 глубоких вдоха, в конце 3-го вдоха сильно откаш­ляться и сплюнуть мокроту в нее.

4.Убедитесь, что получено достаточное количество мокроты (3-5мл.) и что это не слюна.

5.Медработник сам закрывает крышкой плевательницу и помещает ее в специальную коробку или бикс для транспортировки – 1-я проба.

6.Снаружи бикс обрабатывают спиртом.

7.Медработник моет руки в перчатках с мылом.

8.Снимите спец.одежду, одноразовая уничтожается, многоразовая под­вергается соответствующей дезинфекции.

9.Пациент получает чистую плевательницу для забора на следующий день утренней порции мокроты и доставки ее в мед.учреждение – 2-я проба.

10.Третья проба проводится в этот же день под наблюдением медработ­ника (см. пункты 1,2,3,4,5 данного алгоритма).

Примечание: мокрота собирается в плевательницы с герметически завинчивающи­мися крышками. Емкость маркируется с указанием ФИО, года рождения, даты забора. От каждого подозреваемого пациента на исследование направляются три пробы мокроты. Забор мокроты проводится в отсутствии посторонних людей под ру­ководством и контролем над процедурой медсестрой на открытом воздухе или в хорошо проветриваемой комнате с наличием вытяжной вентиляции и кварцевой лампы. Медработник должен быть в маске, клеенчатом фартуке и резиновых перчатках.

Запрещается принимать пищу, курить на рабочем месте. Загрязненные заразным материалом предметы подлeжат немедленной дезинфекции или уничтожению (погружают в 5% хлорсодержащий раствора на 4 часа). Плевательницы перед их транспортировкой протираются ветошью, смоченной 5% хлорсодержащим раствором.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ СБОРЕ МОКРОТЫ НА АТИПИЧЕСКИЕ КЛЕТКИ

Цель: определение атипичных клеток в мокроте.

Оснащение:

-чистая, широкогорлая банка из прозрачного стекла с крышкой

-бланк направления на исследование.

Алгоритм действия:

1.Подготовьте чистую сухую банку.

2.Оформите направление на исследование.

3.Приклейте на банку этикетку, где укажите Ф.И.О. пациента, отделение, номер палаты, дату и подпись медсестры.

-объясните, что мокрота собирается утром натощак;

перед сбором мокроты необходимо почистить зубы и прополоскать полость рта кипяченой водой (при наличии кровотечения из десен прополоскать рот раствором питьевой соды или 0,01 % раствором калия перманганата);

-откашлять и собрать мокроту в чистую банку в кол 3-5 мл

-в случае отсутствия мокроты необходимо сделать глубокий вдох и только после кашлевого толчка собрать в посуду и закрыть ее крышкой.

5.Собранную мокроту доставьте в лабораторию вместе с направлением не позднее чем через 1 ч после ее сбора.

Примечание:баночка сразу же относится в лаборато­рию в теплом виде.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ СБОРЕ МОКРОТЫ НА ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К АНТИБИОТИКАМ

Оснащение:

-стерильная чашка Петри или стерильная плевательница

-бланк направления на исследование.

Алгоритм действия:

1.Накануне исследования получите из бактериологичес­кой лаборатории стерильную чашку Петри или стерильную плевательницу.

2.Оформите направление на исследование.

3.Приклейте на стерильную плевательницу этикетку.

-объясните, что мокрота собирается утром натощак;

-перед сбором мокроты необходимо почистить зубы и прополоскать полость рта кипяченой водой;

-первая порция мокроты не собирается в плевательницу, а сплевывается;

-последующая порция мокроты собирается в стерильную плевательницу и закрывается крышкой.

5. Собранную мокроту вместе с направлением доставьте в лабораторию.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ВЗЯТИИ МАЗКА ИЗ НОСА

Цель: диагностистическая.

Оснащение:

-стерильный металлический помазок в стеклянной пробирке

Алгоритм действия:

1.Объясните порядок проведения процедуры пациенту, получите согласие.

2.Тщательно вымойте руки, наденьте перчатки.

3.Усадите больного к окну(голова должна быть слегка запрокинута).

4.Возмите пробирку в левую руку, правой рукой извлечь из пробирки помазок.

5.Левой рукой приподнимите кончик носа больного, правой – ввести помазок лёгкими вращательными движениями в нижний носовой ход с одной стороны, затем – с другой стороны.

Читайте также:  Нервный тик: виды, причины и симптомы заболевания

6.Осторожно, не касаясь наружной поверхности пробирки, ввести помазок с материалом для посева в пробирку.

7.Заполните направление (фамилия, имя, отчество больного, «Мазок из носа», дата и цель исследования, наименование лечебного учреждения).

8.Отправьте пробирку с направлением в лабораторию.

9.Снимите перчатки, вымойте руки.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ВЗЯТИИ МАЗКА ИЗ НОСА И ЗЕВА

Цель:выявить возбудителя заболевания.

-определение флоры в полости носа и зева с лечебной, диагностической целью для выявления бактерио­носительства.

Оснащение:

-стерильные пробирки с ват­ными тампонами

-их доставляют из лаборатории.

Алгоритм действия:

1.Посадите пациента лицом к источнику света.

2.Предложите ему открыть рот.

3.Левой рукой со шпателем придавите корень языка книзу.

4.Правой рукой извлеките из пробирки стерильный там­пон и проведите им по дужкам и небным миндалинам (слева и справа), не касаясь слизистой рта и языка.

5.Осторожно введите стерильный тампон в пробирку, не касаясь ее стенок.

7.Наклоните слегка голову больного назад.

8.Возьмите пробирку в левую руку, правой извлеките тампон.

9.Легкими поступательно-вращательными движениями введите тампон в нижний носовой ход с одной, а затем с дру­гой стороны (в каждый носовой ход – разные тампоны).

10.Осторожно введите тампон в пробирку, не касаясь на­ружных стенок.

12.Оформите направление, в котором укажите: цель ис­следования; Ф.И.О. пациента, возраст; отделение, номер па­латы; поставьте дату взятия анализа, подпись.

13.Незамедлительно доставьте пробирки в бактериологи­ческую лабораторию.

14. Снимите перчатки, вымойте руки.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ПОДГОТОВКЕ ПАЦИЕНТА И СБОРА МОЧИ НА ОБЩИЙ АНАЛИЗ

Цель:диагностическая.

Оснащение:

– чистая сухая банка вместимостью 200-250 мл.

– направление на исследование.

Подготовка пациента:

-Объясните пациенту цель и правила проведения иссле­дования.

– Накануне пациенту необходимо воздержаться от упо­требления больших количеств моркови и свеклы, от приема мочегонных средств, сульфаниламидов.

-Нельзя менять питьевой режим за сутки до исследо­вания.

-Перед забором мочи проведите туалет наружных поло­вых органов.

Алгоритм действия:

1.Накануне исследования подготовьте широкогорлую стеклянную посуду (вымойте и высушите ее).

2.Подготовьте направление, в котором укажите: общий анализ мочи, Ф.И.О. пациента, возраст, отделение, номер па­латы; поставьте дату и подпись.

3.Соберите утреннюю мочу – 100-150 мл.

4.Отправьте собранную мочу влабораторию не позд­нее 9.00.

Примечание: посуду нельзя мыть раствором соды (моча быстро ощелачивается). Нельзя использовать посуду из-под молока, синтетических моющих средств.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ПОДГОТОВКЕ ПАЦИЕНТА И СБОРА МОЧИ ПО НЕЧИПОРЕНКО

Цель:количественное определение клеточных элементов в моче.

Оснащение:

– чистая сухая емкость

– направление на исследование.

Алгоритм действия:

1.Накануне исследования подготовьте чистую, сухую ем­кость.

2.Промаркируйте посуду, выдайте пациенту.

3.Подготовьте направление, в котором укажите: анализ мочи по Нечипоренко, Ф.И.О. пациента, возраст; отделение, номер палаты, поставьте дату и подпись.

4.Объясните пациенту, что на исследование необходимо собрать среднюю порцию мочи, предварительно проведя туалет наружных половых органов.

5.Доставьте собранную мочу в лабораторию.

АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЙ ПРИ ПОДГОТОВКЕ ПАЦИЕНТА И СБОР МОЧИ ПО ЗИМНИЦКОМУ

Цель: диагностическая.

Оснащение:

– чистые промаркированные сухие емкости (10)

Подготовка пациента:

– Перед проведением исследования отмените мочегонные препараты.

– Ограничьте употребление жидкости до 1,5 л в сутки, чтобы не произошло увеличения диуреза и снижения отно­сительной плотности.

Алгоритм действия:

1.Вымойте и просушите 8 флаконов емкостью 200 мл и 2-3 дополнительных.

2.Оформите этикетку на каждый флакон, в которой укажите: анализ мочи по Зимницкому, порция № 1, 9.00, Ф.И.О. пациента, возраст; отделение, номер палаты; по­ставьте дату и подпись.

3.Объясните пациенту, что в день исследования он дол­жен опорожнить мочевой пузырь в унитаз в 6.00, затем по­следующие порции мочи собрать в приготовленную отдельную посуду через каждые три часа.

4.Ночью, в положенное время сбора мочи, разбудите па­циента.

5.Утром, не позднее 8.00, все порции мочи отправьте вклиническую лабораторию.

Примечание:если моча не поместилась, то она собира­ется в дополнительную емкость, на этикетке пишется: «До­полнительная моча к порции № . ». При отсутствии мочи в положенное время емкость отправляется в лабораторию пустой.

Последнее изменение этой страницы: 2016-04-18; Нарушение авторского права страницы

-объясните, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты;.

Бактериоскопическое исследование.

Из гнойных частиц мокроты готовят препарат и окрашивают по Цилю-Нельсену (для выявления микобактерий туберкулеза) и по Грамму (для выявления кокковой флоры). Однако, более достоверным методом распознавания микрофлоры в мокроте является бактериологический метод посева мокроты на среду, который позволяет выявить возбудителя заболевания и подобрать адекватную антибактериальную терапию.

Контрольные вопросы

1. Как провести забор мокроты?

2. Что входит в общеклинический анализ мокроты и в какой последовательности он проводится?

3. В чем заключается макроскопическая оценка мокроты?

4. Какого характера бывает мокрота и от чего это зависит?

5. Взаимосвязь цвета и консистенции мокроты с ее характером.

6. Макроскопические свойства мокроты у больных с воспалительными изменениями бронхов.

7. Макроскопические свойства мокроты у больных с деструктивными процессами легочной ткани.

8. В чем заключается микроскопическая оценка мокроты?

9. Какие клетки можно увидеть при микроскопии нативных препаратов мокроты?

10. Какие элементы клетки можно увидеть при микроскопии окрашенных препаратов мокроты?

11. Микроскопические свойства мокроты у больных с воспалительными изменениями бронхов.

12. Микроскопические особенности мокроты у больных с аллергическими бронхоспастическими поражениями дыхательных путей.

13. Микроскопические свойства мокроты у больных с деструктивными поражениями легочной ткани.

14. В чем заключается бактериоскопическое исследование мокроты?

15. Клиническое значение определения возбудителей в мокроте.

Тесты для самоподготовки

1. Мокрота ржавого цвета характерна для:

1) туберкулеза легких;

*2) долевой пневмонии;

4) бронхиальной астмы;

2. О каком заболевании надо думать, если в мокроте находят спирали Куршмана и кристаллы Шарко—Лейдена:

*3) бронхиальной астме;

4) эмфиземе легких;

5) бронхоэктатической болезни?

3. В случае выявления атипичных клеток в пунктате надо думать о:

*2) злокачественном процессе;

4. При каком заболевании характерны эозинофилы в мокроте:

1) хроническом бронхите;

*2) бронхиальной астме;

5) абсцессе легкого.

5. Для каких заболеваний характерно разделение мокроты на слои:

*2) хронических гнойных процессов;

3) сухого плеврита;

5) катарального бронхита?

6.Повышение количества альвеолярных макрофагов в мокроте характерно для:

1) бронхиальной астмы;

*5) воспалительных процессов в легких.

7. Что такое клетки «сердечных пороков»

1) атипичные клетки;

*4) альвеолярные макрофаги, которые имеют включения гемосидерина;

5) клетки цилиндрического мерцательного эпителия?

8. О чем свидетельствует наличие эластичных волокон в мокроте:

1) о воспалительном процессе;

*2) распаде легочной ткани;

4) бронхиальной астме;

Задачи I уровня.

Задача №1

В анализ мокроты получены следующие данные: цвет – зеленый, характер – гнойно – кровянистый, густой консистенции, зловонный запах; микроскопические данные; лейкоциты на всем поле зрения, эритроциты – 40 – 50 в поле зрения, эластичные волокна – небольшое количество; бактериологически найден патогенный стафилококк. О каком заболевании (процессе) системы органов дыхания можно думать?

Ответ: Абсцесс легкого (образование полости в легком).

Задача №2

При исследовании мокроты обнаружили: цвет – светло – зеленый, характер слизисто – гнойный, вязкой консистенции, без запаха, микроскопические данные; лейкоциты 20-25 в поле зрения, эритроциты 2-3 в поле зрения, кристаллы Шарко – Лейдена единичны. Для какого заболевания характерна такая мокрота?

Ответ: Бронхиальная астма.

Задачи II уровня

Клинико-лабораторная задача № 1

При исследовании мокроты больного получены следующие данные: Цвет – желтый, характер слизисто-гнойный, вязкой консистенции, без запаха.

Микроскопически: лейкоциты 20-25 в поле зрения, эозинофилы 4-5 в поле зрения, эпителий цилиндрический 3-5 в поле зрения, кристаллы Шарко-Лейдена единичны.

1.Про какой патологический процесс органов дыхания свидетельствуют макро и микроскопические свойства мокроты?

2.Для какого заболевания характерна такая мокрота?

Дата добавления: 2018-04-15 ; просмотров: 450 ;

4 эмфиземе легких;.

Кому ее назначают

В дерматологии бактериоскопия назначается при любых подозрениях на инфекционное заболевание кожи, включая венерологические болезни. Объектом для взятия мазка являются шанкры, папулы, гнойные струпья и прочие патологические образования кожи. Наиболее часто удается обнаружить под микроскопом стафилококки и стрептококки. Если не удается взять мазок, производят соскоб с кожной поверхности.

Чаще других вызывает гнойные процессы на кожной поверхности золотистый стафилококк. Микроорганизм имеет преимущества в выживании перед другими организмами. Ультрафиолетовый свет, спиртовые растворы, пероксид водорода не вызывают гибели прокариотического организма. Единственный враг для золотистого стафилококка – бриллиантовая зелень, именуемая в народе «зеленкой». Под микроскопом эти организмы выглядят в виде ярко-желтых шариков, собранных в колонии гроздевидной формы.

Другими патогенными микроорганизмами, поражающими кожу, являются коринебактерии и пропионибактерии.

Под микроскопом эти организмы выглядят в виде ярко-желтых шариков, собранных в колонии гроздевидной формы.

Бактериологическое исследование

Плевральной жидкости

Транссудаты, как правило, стерильны, однако, они могут инфицироваться при многократных пункциях.

Экссудатытакже иногда стерильны (ревматические плевриты, рак легкого, лимфосаркома). В гнойных экссудатах при бактериоскопии окрашенного по Граму мазка или при посеве на питательные среды выявляется разнообразная микрофлора (пневмококки, стрептококки, стафилококки, энтерококки, клебсиеллы, кишечная палочка и др.). Для целенаправленного лечения определяют чувствительность микроорганизмов к антибиотикам. В гнилостных экссудатах обнаруживается анаэробная флора. В серозных, геморрагических экссудатах туберкулезной этиологии можно обнаружить бациллы Коха (микобактерии туберкулеза). Для этого экссудат подвергают длительному центрифугированию или обработке методом флотации.

Пробой Ривальта определяется белковое вещество — серозомуцин.

Исследование мокроты

Мокрота —патологическое отделяемое дыхательных органов: легких, бронхов, трахеи. Выделяется при кашле или отхаркивании. К мокроте, как правило, примешивается секрет полости рта (слюна) и слизь из носоглотки. Потому очень важным в исследовании мокроты является тщательное соблюдение правил ее сбора.

Для клинического лабораторного исследования берется утренняя порция мокроты до приема пищи после тщательного полоскания рта и горла. Мокрота собирается в чистую сухую стеклянную банку или чашку Петри. Лабораторное исследование мокроты включает макроскопическое (количество, характер, консистенция и запах, наличие примесей), микроскопическое исследование, бактериологическое, а также посев мокроты на питательные среды для выявления возбудителя и определения его чувствительности к антибиотикам.

При необходимости мокроту сохраняют в прохладном месте, лучше в холодильнике.

Доставленную в лабораторию мокроту, вначале исследуют макроскопически (т.е. определяют физические свойства).

Количествомокроты (за сутки) зависит от характера патологического процесса. Бронхит, бронхиальная астма, крупозная пневмония обычно сопровождаются скудным (2-5 мл) отделением мокроты — единичными плевками. При вскрытии абсцесса легкого, гангрене характерно выделение мокроты в большом количестве, которое может доходить иногда до 1-2 литров в сутки.

Характер: мокрота неоднородна. В ее состав входят слизь, гной, кровь, серозная жидкость, фибрин. Содержание в мокроте указанных субстратов определяет ее характер.

Характер мокроты может быть: слизистый, слизисто-гнойный, слизисто-гнойно-кровянистый, серозный, серозно-гнойный, кровянисто-слизистый.

При описании мокроты принято ставить преобладающий субстрат на второе место.

Цветзависит от:

• характера мокроты (преобладание одного из субстратов придают ей соответствующий оттенок);

• вдыхаемых частиц, окрашивающих мокроту. Сероватый, желтоватый, зеленоватый цвет мокроты зависит от содержания и количества гноя.

Ржавый, красный, коричневатый, желтый цвет — от примеси крови и продуктов её распада. Серый и чёрный цвета придают мокроте уголь и пыль, белый — мучная пыль.

Вдыхаемая пыль, содержащая красители, может окрашивать мокроту в голубой и другие цвета.

Консистенциязависит от состава мокроты. Вязкая консистенция наблюдается при наличии слизи, клейкая — при большом количестве фибрина, полужидкая — от присутствия серозной жидкости в слизисто — гнойной мокроте, жидкая — от наличия серозной жидкости.

Запахнеприятный запах свежевыделенной мокроты определяется при абсцессе лёгкого, а гнилостный — при гангрене, распаде злокачественной опухоли. В остальных случаях свежевыделенная мокрота запаха не имеет.

Деление на слоинаблюдается в случаях выделения мокроты при опорожнении обширных полостей в лёгком (абсцесс лёгкого, бронхоэктазы). Нижний, плотный слой состоит из гноя, детрита, верхний слой — жидкий. На поверхности его иногда имеется третий — пенистый слой.

Микроскопическое исследование мокротысостоит из изучения нативных и окрашенных препаратов. В нативном препарате могут встречаться эпителиальные клетки, лейкоциты, единичные эритроциты, друзы актиномикоза, элементы эхинококка, кристаллы жирных кислот и гематоидина, тяжи слизи.

Можно рассмотреть в нём элементы бронхиальной астмы: эозинофилы в большом количестве, кристаллы Шарко-Лейдена и спирали Куршмана.

Эозинофилы представляют собой округлые образования тёмно-серого цвета.

Кристаллы Шарко-Лейдена — блестящие, прозрачные, часто имеющие форму октаэдров и ромбиков. Считается, что они белковой природы, образуются при разрушении эозинофилов.

Спирали Куршмана — слепки прозрачной слизи со спастически сокращенных бронхов.

Эластические волокна можно также видеть в нативном препарате. Они образуются в результате распада ткани лёгких. Эластические волокна обнаруживаются при туберкулёзе и абсцессе лёгкого. Они представляют собой двухконтурные блестящие образования.

Лейкоциты всегда содержатся в мокроте в большем или меньшем количестве, в зависимости от ее характера. Чем больше гноя в мокроте, тем больше лейкоцитов.

Эритроциты имеют вид дисков желтоватого цвета. Единичные эритроциты могут встречаться в любой мокроте. В большом количестве обнаруживаются в мокроте, окрашенной кровью (легочное кровотечение, инфаркт легкого, застой в малом круге кровообращения, новообразование легкого)

Клетки плоского эпителия попадают в мокроту из полости рта, носоглотки.

Атипические клетки при злокачественных новообразованиях.

Альвеолярные макрофаги относят к клеткам гистиоцитарной системы. В препаратах располагаются в виде крупных скоплений, чаще в слизистой мокроте с небольшим количеством гноя. Обнаруживаются при разнообразных патологических процессах (пневмонии, бронхиты, профессиональные заболевания).

Бактериологическое исследование мокроты заключается в посеве мокроты на специальные среды и используется в том случае, если бактериоскопическое исследование не позволяет обнаружить предполагаемого возбудителя. Бактериологическое исследование позволяет идентифицировать вид микробов, определять их вирулентность. В клинической практике мокрота может являться материалом для определения чувствительности микробов к антибиотикам.

Контрольные вопросы

1. Назовите метод получения плевральной жидкости.

2. Что такое транссудат и причины его возникновения?

3. Что такое экссудат и причины его возникновения?

4. Отличие транссудата от экссудата.

5. Диагностическое значение микроскопического исследования плевральной жидкости.

6. Перечислите виды экссудатов.

7. Назовите причины геморрагического экссудата. Перечислите его особенности.

8. Что такое хилезный экссудат? Когда он наблюдается?

9. Что такое хилезоподобный экссудат? Перечислите его отличия от хилезного экссудата.

10. Назовите отличительные признаки серозного и гнойного экссудатов.

11. Что такое мокрота? Как производится сбор мокроты для лабораторного и микробиологического исследования?

12. Значение макроскопического исследования мокроты.

13. Диагностическое значение количества мокроты.

14. Какой цвет мокроты может наблюдаться?

15. С чем связано появление «ржавой» мокроты? Когда это наблюдается?

16. Диагностическое значение характера мокроты.

17. Значение микроскопического исследования мокроты.

18. Что такое спирали Куршмана? Когда они появляются?

19. Диагностическое значение эластических волокон в мокроте.

20. О чем свидетельствует появление кристаллов Шарко-Лейдена?

21. Что такое пробки Дитриха? Когда они появляются в мокроте?

22. Чем отличаются пробки Дитриха от «рисовидных телец»?

23. Значение бактериологического исследования мокроты.

Контрольные задачи

1. Больной с наличием жидкости в плевральной полости справа до II ребра поступил в приемное отделение больницы, где предложено срочно удалить жидкость. Как называется процедура по изъятию жидкости из плевральной полости? По каким топографическим линиям ее проводят?

2. У больного с недостаточностью кровообращения выявлено наличие жидкости в плевральной полости. Жидкость какого происхождения накопилась в плевральной полости?

3. У больного с длительным ревматическим анамнезом обнаружена жидкость в плевральной полости. Какого происхождения жидкость в плевральной полости?

4. При проведении плевральной пункции больному получен геморрагический экссудат. Какой процесс можно заподозрить в данном случае?

5. При проведении плевральной пункции получена жидкость с относительной плотностью 1,010, содержание белка — 15 г/л, проба Ривальты отрицательная. Оцените характер жидкости.

6. С диагностической целью больному произведена плевральная пункция, при которой получена жидкость желто-зеленого цвета. Содержание белка 52 г/л, проба Ривальты положительная. Оцените характер жидкости.

7. Перед сбором утренней порции мокроты больной забыл почистить зубы и произвести туалет полости рта. Достоверный ли результат лабораторного исследования мокроты в данном случае?

8. При макроскопическом исследовании мокрота прозрачная, стекловидная, при микроскопическом исследовании обнаружено большое количество эозинофилов, спирали Куршмана, кристаллы Шарко-Лейдена. Для какого заболевания характерен данный анализ мокроты?

9. При исследовании мокроты обнаружены эластические волокна в большом количестве, кристаллы холестерина. Для какого процесса характерен данный анализ мокроты?

10. При окраске мокроты по Циль-Нильсону выявлено большое количество микроорганизмов. Для выявления каких микроорганизмов применяется данная окраска?

11. У больного на фоне резкого удушья выделяется обильное количество жидкой, опалесцирующей пенистой мокроты. Для какого состояния характерно данное макроскопическое исследование мокроты?

12. У больного кашель с выделением умеренного количества слизисто-гнойно-кровянистой мокроты, содержащей плотные беловатые комочки «рисовидные тельца». О какой патологии можно думать в этом случае?

Что такое хилезный экссудат.

Добавить комментарий